سال 17، شماره 5 - ( مهر - آبان 1402 )
جلد 17 شماره 5 صفحات 595-585 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Khalid Ibrahim S. Phenotypic and Genotypic Analysis of Antibiotic Resistance in Proteus vulgaris Isolated from ICU Patients in Baghdad Hospitals. Iran J Med Microbiol 2023; 17 (5) :585-595
URL: http://ijmm.ir/article-1-2145-fa.html
URL: http://ijmm.ir/article-1-2145-fa.html
خالد ابراهیم صهیب. تجزیه و تحلیل فنوتیپی و ژنوتیپی مقاومت آنتی بیوتیکی در پروتئوس ولگاریس جدا شده از بیماران ICU در بیمارستان های بغداد. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. 1402; 17 (5) :585-595
گروه بیهوشی، دانشکده بهداشت و تکنیک های پزشکی، دانشگاه فنی میانه، بغداد، عراق ، suhaib.khalid@mtu.edu.iq
چکیده: (586 مشاهده)
زمینه و اهداف: پروتئوس ولگاریس، یک باکتری گرم منفی، یکی از علل شایع عفونت های انسانی به ویژه عفونت های مجاری ادراری (UTIs) می باشد. این مطالعه با هدف ارزیابی الگوهای مقاومت چند دارویی پروتئوس ولگاریس جدا شده از نمونه‌های بالینی مختلف انجام شد و تأثیر آن بر عفونت‌های مرتبط با مراقبت‌های بهداشتی را روشن کرد.
مواد و روش کار: در این مطالعه مقطعی، ۳۰۰ نمونه بالینی شامل ۱۰۰ نمونه ادرار، ۵۰ نمونه زخم، ۵۰ نمونه واژینال، ۵۰ کشت خون و ۵۰ نمونه خلط جمع‌آوری شد. همه نمونه‌ها به همان تعداد (۵۰:۵۰) انتخاب شدند، به جز نمونه‌های ادرار (۱۰۰) زیرا نمونه‌های ادرار در این مطالعه بیشتر در مجموعه بیماران مورد مطالعه موجود بود که عفونت‌های ادراری پیشرفته‌تری را ارائه کردند. تکنیک‌های فنوتیپی و مولکولی برای شناسایی و شناسایی این باکتری‌ها با تمرکز بر شناسایی ژن‌های مقاومت مانند UreC و blaCTX-M استفاده شد.
یافته ها: از بین ۳۰۰ نمونه بالینی، ۱۵۰ نمونه کشت مثبت برای گونه پروتئوس به دست آمد. این جدایه ها از نمونه های بالینی مختلف شامل ۴۸ درصد از ادرار، ۳۲ درصد از زخم، ۱۰ درصد از واژن، ۸ درصد از خون و ۲ درصد از خلط به دست آمد. از ۱۰۰ ایزوله P. vulgaris، ۸۸٪ ژن های مقاومت در DNA کروموزومی و پلاسمیدها را نشان دادند. به طور خاص، ۷۵٪ حامل ژن UreC و ۵۰٪ حامل ژن blaCTX-M بودند. بیشترین شیوع این ژن های مقاوم در نمونه های ادرار و چرک زخم مشاهده شد.
نتیجه‌گیری: این مطالعه شیوع نگران‌کننده ایزوله‌های P. vulgaris مقاوم به چند دارویی (MDR) به‌ویژه در عفونت‌های دستگاه ادراری زنان را نشان داد. حضور ژنومی ژن UreC که آنزیم اوره آز را کد می کند و ژن blaCTX-M که به سفوتاکسیم مقاومت می کند، بر ضرورت استراتژی های ضد میکروبی موثر در مبارزه با این عفونت ها تاکید می کند.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
مقاومت پادزیستی (آنتی بیوتیکی)
دریافت: 1402/4/1 | پذیرش: 1402/6/7 | انتشار الکترونیک: 1402/9/8
دریافت: 1402/4/1 | پذیرش: 1402/6/7 | انتشار الکترونیک: 1402/9/8
فهرست منابع
1. O'Hara Caroline M, Brenner Frances W, Miller JM. Classification, Identification, and Clinical Significance of Proteus, Providencia, and Morganella. Clin Microbiol Rev. 2000;13(4):534-46. [DOI:10.1128/CMR.13.4.534] [PMID] [PMCID]
2. Różalski A, Torzewska A, Moryl M, Iwona K, Agnieszka M, Kinga O, et al. Proteus sp.-an opportunistic bacterial pathogen-classification, swarming growth, clinical significance and virulence factors. Acta Univ Lodz Folia Biol Oecol. 2013(8):1-17. [DOI:10.2478/fobio-2013-0001]
3. Chen SL, Jackson SL, Boyko EJ. Diabetes Mellitus and Urinary Tract Infection: Epidemiology, Pathogenesis and Proposed Studies in Animal Models. J Urol. 2009;182(6, Supplement):S51-S6. [DOI:10.1016/j.juro.2009.07.090] [PMCID]
4. Foxman B. Urinary tract infection syndromes: occurrence, recurrence, bacteriology, risk factors, and disease burden. Clin Infect Dis. 2014;28(1):1-13. [DOI:10.1016/j.idc.2013.09.003] [PMID]
5. Nikaido H. Multidrug Resistance in Bacteria. Annu Rev Biochem. 2009;78(1):119-46. [DOI:10.1146/annurev.biochem.78.082907.145923] [PMID] [PMCID]
6. Georgios M, Egki T, Effrosyni S. Phenotypic and molecular methods for the detection of antibiotic resistance mechanisms in Gram negative nosocomial pathogens. Trends in infectious diseases2014. p. 139-62. [DOI:10.5772/57582]
7. Al-Bassam WW, Al-Kazaz A-K. The isolation and characterization of Proteus mirabilis from different clinical samples. J Biotech Res Cen. 2013;7(2):24-30. [DOI:10.24126/jobrc.2013.7.2.261]
8. Pandey JK, Narayan A, Tyagi S. Prevalence of Proteus species in clinical samples, antibiotic sensitivity pattern and ESBL production. Int J Curr Microbiol Appl Sci. 2013;2(10):253-61.
9. Sohn KM, Kang CI, Joo EJ, Ha YE, Chung DR, Peck KR, et al. Epidemiology of ciprofloxacin resistance and its relationship to extended-spectrum β-lactamase production in Proteus mirabilis bacteremia. Korean J Intern Med. 2011;26(1):89-93. [DOI:10.3904/kjim.2011.26.1.89] [PMID] [PMCID]
10. Hall-Stoodley L, Stoodley P. Evolving concepts in biofilm infections. Cell Microbiol. 2009;11(7):1034-43. [DOI:10.1111/j.1462-5822.2009.01323.x] [PMID]
11. Ghaima KK, Hamid HH, Hassan SF. Biofilm formation, Antibiotic resistance and Detection of mannose-resistant Proteus-like (MR/P) fimbriae genes in Proteus mirabilis isolated from UTI. Int J Chemtech Res. 2017;10(5):964-71.
12. Jones SM, Yerly J, Hu Y, Ceri H, Martinuzzi R. Structure of Proteus mirabilis biofilms grown in artificial urine and standard laboratory media. FEMS Microbiol Lett. 2007;268(1):16-21. [DOI:10.1111/j.1574-6968.2006.00587.x] [PMID]
13. O'Toole G, Kaplan HB, Kolter R. Biofilm Formation as Microbial Development. Annu Rev Microbiol. 2000;54(1):49-79. [DOI:10.1146/annurev.micro.54.1.49] [PMID]
14. Flemming H-C, Wingender J. The biofilm matrix. Nat Rev Microbiol. 2010;8(9):623-33. [DOI:10.1038/nrmicro2415] [PMID]
15. Al-Sarray AJ, Al-Mussawi IM, Al-Noor TH, Abu-Zaid Y. Organo-Clay Composites of Intercalated 4-Methylaniline and Its Schiff Base Derivative: Preparation and Characterization. J Med Chem Sci. 2022;5(6):1094-101.
16. Jacobsen SM, Stickler DJ, Mobley HL, Shirtliff ME. Complicated catheter-associated urinary tract infections due to Escherichia coli and Proteus mirabilis. Clin Microbiol Rev. 2008;21(1):26-59. [DOI:10.1128/CMR.00019-07] [PMID] [PMCID]
17. Mishra M, Thakar YS, Pathak AA. Haemagglutination, Haemolysin Production And Serum Resistance of Proteus and Related Species Isolated From Clinical Sources. Indian J Med Microbiol. 2001;19(2):5-11. [DOI:10.1016/S0255-0857(21)03364-8] [PMID]
18. Apos, Hara CM, Brenner FW, Steigerwalt AG, Hill BC, Holmes B, et al. Classification of Proteus vulgaris biogroup 3 with recognition of Proteus hauseri sp. nov., nom. rev. and unnamed Proteus genomospecies 4, 5 and 6. Int J Sys Evol Microbiol. 2000;50(5):1869-75. [DOI:10.1099/00207713-50-5-1869] [PMID]
19. Obadire SO, Mitsan O, Ip U. Prevalence and Antibiotic Susceptibility Pattern of Proteus Species Isolated from Clinical Specimens from Selected Hospitals in Jigawa State, North-West Nigeria. Sokoto j Med lab Sci. 2022;7(4):27-34. [DOI:10.4314/sokjmls.v7i4.3]
20. Al-Sarray AJA. Molecular and electronic properties of Schiff bases derived from different aniline derivatives: density functional theory study. Eurasian Chem Commun. 2023;5(4):317-26.
21. Collee JG, Miles RS, Watt B. Tests for identification of bacteria. Mackie and McCartney practical medical microbiology1996. p. 131-49.
22. Al-Sarray AJA, Al-Kayat T, Mohammed BM, Al-assadi MJB, Abu-Zaid Y. Dielectric and Electrical Properties of Intercalated 1-(4-nitrophenyl)-N-(p-tolyl) methanimine into the Interlayers of Bentonite Clay. J Med Chem Sci. 2022;5(7):1321-30.
23. Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Winn W. The enterobacteriaceae. Color atlas and textbook of diagnostic microbiology. 51997. p. 211-302.
24. Bauer AW, Kirby WMM, Sherris JC, Turck M. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. Am J Clin Pathol. 1966;45(4_ts):493-6. [DOI:10.1093/ajcp/45.4_ts.493] [PMID]
25. Wayne PA. Clinical and laboratory standards institute (CLSI). Performance standards for antimicrobial susceptibility testing2015.
26. Bahashwan SA, El Shafey HM. Antimicrobial resistance patterns of Proteus isolates from clinical specimens. Eur Sci J. 2013;9(27):57-63.
27. StepanoviĆ S, VukoviĆ D, Hola V, Bonaventura GD, DjukiĆ S, ĆIrkoviĆ I, et al. Quantification of biofilm in microtiter plates: overview of testing conditions and practical recommendations for assessment of biofilm production by staphylococci. APMIS. 2007;115(8):891-9. [DOI:10.1111/j.1600-0463.2007.apm_630.x] [PMID]
28. kadhim Al-Imam MJ, Al-Rubaii BAL. The influence of some amino acids, vitamins and anti-inflammatory drugs on activity of chondroitinase produced by Proteus vulgaris caused urinary tract infection. Iraqi J Sci. 2016;57:2412-21.
29. Kamil TD, Jarjes SF. Molecular Characterization of Proteus spp. from patients admitted to hospitals in Erbil City. Polytech J. 2021;11(2):95-9. [DOI:10.25156/ptj.v11n2y2021.pp95-99]
30. Ahmed OB, Asghar AH, Bahwerth FS. Prevalence of ESBL genes of Pseudomonas aeruginosa strains isolated from Makkah Hospitals, Saudi Arabia. Euro J Biol Med Sci Res. 2015;3(6):12-8.
31. Prasad RR, Shree V, Sagar S, Kumar S, Kumar P. Prevalence and antimicrobial susceptibility pattern of Proteus species in clinical samples. Int J Curr Microbiol App Sci. 2016;5(4):962-8. [DOI:10.20546/ijcmas.2016.504.109]
32. Al Kady LM, El Toukhy MAEH, El Shafie MAER, Mohammed HAEA, Mohammed Saber NI. Asymptomatic urinary tract infection by proteus mirabilis in rheumatoid arthritis patients. Zagazig Univ Med J. 2019;25(6):928-34. [DOI:10.21608/zumj.2019.10802.11360]
33. Mirzaei A, Habibi M, Bouzari S, Asadi Karam MR. Characterization of Antibiotic-Susceptibility Patterns, Virulence Factor Profiles and Clonal Relatedness in Proteus mirabilis Isolates from Patients with Urinary Tract Infection in Iran. Infect Drug Resist. 2019;12(null):3967-79. [DOI:10.2147/IDR.S230303] [PMID] [PMCID]
34. Pal N, Sharma N, Sharma R, Hooja S, Maheshwari RK. Prevalence of multidrug (MDR) and extensively drug resistant (XDR) Proteus species in a tertiary care hospital, India. Int J Curr Microbiol Appl Sci. 2014;3:243-52.
35. Mishu NJ, Shamsuzzaman SM, Khaleduzzaman HM, Nabonee MA. Nigha zannat dola, Azmeri haque. Association between Biofilm Formation and Virulence Genes Expression and Antibiotic Resistance Pattern in Proteus mirabilis, Isolated from Patients of Dhaka Medical College Hospital. Arch Clin Biomed Res. 2022;6:418-34.
36. Fm S, Se G, Ha A. Antimicrobial resistance of clinical Proteus mirabilis isolated from different sources. Zagazig j Pharm Sci. 2018;27(1):57-63. [DOI:10.21608/zjps.2018.38156]
37. Wasfi R, El-Rahman OAA, Mansour LE, Hanora AS, Hashem AM, Ashour MS. Antimicrobial activities against biofilm formed by Proteus mirabilis isolates from wound and urinary tract infections. Indian J Med Microbiol. 2012;30(1):76-80. [DOI:10.4103/0255-0857.93044] [PMID]
38. Passat DNF. Local Study of blaCTX-M genes detection in Proteus spp. by using PCR technique. Iraqi J Sci. 2016;57((2C)):1371-6.
39. Hamid SF, Taha AB, Abdulwahid MJ. Distribution of blaTEM, blaSHV, blaCTX-M, blaOXA, and blaDHA in Proteus mirabilis Isolated from Diabetic Foot Infections in Erbil, Iraq. Cell Mol Biol. 2020;66(1):88-94. [DOI:10.14715/cmb/2019.66.1.15]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
